lamina propria

Laboratorio de Inmunometabolismo

Mouse
Autor/a

omc

Fecha de publicación

13 de junio de 2026

Resumen

Obtener células de lámina propia de intestino de ratón

Descripción del Protocolo

NotaPasos
  • Precalentar a 37°C solución de PBS 1X y Solución de Hanks-SFB (5%).

  • Eutanasiar a los ratones por dislocación cervical. Una vez muertos los ratones, realizar una incisión abdominal por planos por piel y peritoneo. Separar el intestino delgado del estómago y hacer un corte en el píloro gástrico. Eliminar el ciego y continuar hasta el recto.

  • Extraer cuidadosamente el intestino, retirar el tejido mesentérico adyacente y las placas de Peyer.

  • Cortar el intestino longitudinal de extremo a extremo y colocarlo en una bandeja con PBS 1X/37°C y agitar suavemente. Transferir a una nueva bandeja y repetir dos veces el proceso.

  • Cortar el intestino en fragmentos de 0.5cm y colocar en un tubo falcón (50ml): EDTA (2mM) en solución de Hanks-SFB (30ml). Agitar a 250 rpm/37°C/20 minutos.

  • Remover el tejido y repetir la incubación con soluciones frescas.

  • Cortar finamente el tejido en fragmentos de 1mm y agregar colagenasa tipo IV (1mg/ml) y DNasa I (800\(\mu\)g) disueltas en solución de Hanks-SFB (20ml). Poner en agitación continua 200rpm/37°C/10 minutos.

  • Pasar la solución por un colador celular de 100\(\mu\)m y colectar la suspensión celular, agregar 20ml de solución de Hanks-SFB frío. Centrifugar 1500 RPM/4°C/5 min.

  • Resuspender el botón celular y contar las células en la cámara de Neubauer.

  • Es importante mantener las soluciones a 37ºC.

Diagrama de Flujo

Figura

Anexos

Soluciones

Solución de Hanks

Header 1 Header 2
HBSS 4.75g
Bicarbonato de sodio 0.17g
HEPES 1.2g
SFB 25ml
H2O Aforar a 1L
Reactivos

HBSS Sigma H2387

Material

muchos tubos falcon 50 ml