Bacterias competentes

Laboratorio de Inmunometabolismo

CULTIVO CELULAR
Autor/a

omclab

Fecha de publicación

13 de junio de 2026

Resumen

Extraer células linfoides de pulmón de ratón para los fines que se requiera.

Descripción del Protocolo

NotaPasos
  • Picar una colonia de bacterias, cepas TOP10 o DH5\(\alpha\), y colocar en 15ml de caldo LB (Luria-Bertani) sin antibiótico.

  • Incubar a 37°C/200rpm/12-16 hrs.

  • Transferir 10ml del crecimiento bacteriano a 200ml de caldo LB estéril sin antibiótico.

  • Incubar a 37°C/200rpm y medir la densidad óptica a 600nm cada hora.

  • Una vez llegado a una densidad óptica de 0.6 colocar el cultivo bacteriano en tubos falcón de 50ml fríos.

  • Centrifugar a 5000rpm/30 minutos/4°C.

  • Desechar el sobrenadante y resuspender las bacterias en 10ml de CaCl2 0.1M frio.

  • Centrifugar 10 minutos/5000rpm/4°C.

  • Desechar el sobrenadante y resuspender las bacterias en 10ml de CaCl2 0.1M frio.

  • Incubar una hora en hielo.

  • Centrifugar 5000rpm/10 minutos/4°C y eliminar el sobrenadante.

  • Añadir 2ml de CaCl2 y 20% glicerol frío.

  • Incubar 5 minutos en hielo.

  • Preparar alícuotas de 100\(\mu\)l.

  • Congelar inmediatamente en nitrógeno líquido.

  • Almacenar a -70°C.

  • Todo debe realizarse bajo el mechero en condiciones de esterilidad.

  • Todos los reactivos e insumos utilizados deben de ser estériles.

Diagrama de Flujo

Figura

Anexos

Soluciones

CaCl2

Header 1 Header 2
CaCl2 11.098g
H2O 100ml

Ajustar pH a 7.5 y esterilizar

Reactivos


CaCl2 Sigma

Documentos de ?@sec-ref

(Ramos2014?) Manual de “pENTR™ Directional TOPO Cloning Kits” life technologies Current Protocols in Molecular Biology, Section 1.2.1, Supplement 59. Frederick M. Ausubel et al. 2003.